Az Henri Becquerel által 1896-ban felfedezett
jelenséget (Becquerel, 1896) 1898-ban Marie Curie nevezte el
radioaktivitásnak. Röviddel a radioaktivitás felfedezése után Hevesy
György felfedezte a nyomjelzési elvet és megalkotta a
nyomjelzéstechnikát (Hevesy–Paneth, 1913), amely a fizikai, kémiai és
élettudományok fontos kísérleti eszközévé vált. A módszer fejlődését a
mesterséges radioaktivitás felfedezése (1935, Iréne Curie és Frédéric
Joliot-Curie), majd a mesterséges radioizotópok előállítása jelentősen
segítette. „A radioaktív izotópok indikátorként való alkalmazásáért a
kémiai kutatásban” indoklással 1944-ben Hevesy György kapta a kémiai
Nobel-díjat. Ez az úttörő munka tette lehetővé az élő szervezetben
lezajló biokémiai és fiziológiai folyamatok dinamikai vizsgálatát,
valamint a nukleáris medicina kifejlődését.
A nyomjelzéstechnikában, a kutatási problémák
radioaktivitásmérésen alapuló megoldásakor az első lépés mindig a
megfelelő radioizotóp kiválasztása. Ekkor elsősorban az izotóp
felezési idejét, az ebből adódó moláris aktivitást, az izotóp által
kibocsátott sugárzás fajtáját és energiáját, valamint a radioaktív jel
jelzett molekulán belüli helyzetét kell megvizsgálni. A
sugárzás jellemzői és a jelzett molekula kémiai, biológiai
környezete határozza meg a radioaktivitás mérésére alkalmazandó
módszert, míg a jelzett molekulák moláris aktivitása és a radioizotóp
molekulán belüli helyzete a vizsgálat érzékenységét és specifikusságát
befolyásolja. Biológiai rendszerek vizsgálatára elsősorban a H, C, N,
O, P, S és I radioaktív izotópjai alkalmazhatók (1.
táblázat). Ha a vizsgált rendszer valamely komponensébe ezen
elemek izotópjait építjük be, a vizsgált, fiziológiai jelentőséggel
bíró vegyület szerkezete, kémiai tulajdonságai alig változnak, így a
nyomjelzéses kísérlettel csak minimális mértékben avatkozunk be az
egyébként nem érzékelhető folyamatba, miközben mérhetővé tesszük azt.
Az 1. táblázatban feltüntetett szénizotópok közül pl. a C-14
radioizotóp metabolizmusvizsgálatokban alkalmazható, amikor a
szervezetbe juttatott jelzett vegyület lebomlásának útjai, dúsulásának
helyei térképezhetők fel. Emellett az 5730 éves felezési ideje
következtében radiokarbon-kormeghatározásra is használható a mintában
még meglévő C-14-tartalom mérésével. Ezzel szemben a 20 perces
felezési idejű, pozitront sugárzó C-11 izotóp a képalkotó
diagnosztikai eljárások (pozitronemissziós tomográfia – PET és hibrid
technikák) fontos nuklidja. Az élettudományi kutatásokban a β-sugárzó
izotópok (H-3, C-14, P-32, S-35) felhasználása a legelterjedtebb. Új
gyógyszerek fejlesztésében, a hatóanyagok metabolizmus- és
farmakokinetikai vizsgálataiban főleg a C-14 és H-3 jelzett
vegyületeket lehet alkalmazni. A fehérjeszintézis kutatásában a H-3,
C-14, valamint S-35 jelzett aminosavakat, míg a nukleinsavak
szintézisének vizsgálatára a P-32 és P-33 jelzett nukleotidokat
alkalmazzák. Ez utóbbiaknak is köszönhető a modern genetika és
génterápia kifejlődése. Az idegrendszer működésének tanulmányozására,
neurológiai betegségek klinikai kutatásához, vagy a rákos betegségek
diagnosztizálásához a rövid felezési idejű, pozitronsugárzó
izotópokkal (C-11, N-13, O-15, F-18) jelzett vegyületek az alkalmas
eszközök. Emellett természetesen jelentős diagnosztikai szerep jut a
Tc-99m-nek és más radioaktív fémizotópoknak is.
Laboratóriumunkban elsősorban tríciummal jelzett
vegyületeket állítunk elő, de C-14 és I-125 izotópos jelöléseket is
rendszeresen végzünk. A továbbiakban a trícium nyomjelzéstechnikai
alkalmazására fokuszálunk. A trícium ideális radionuklid biológiai
jelentőséggel bíró molekulák jelöléséhez. Felezési ideje 12,35 év, így
viszonylag nagy moláris aktivitású jelzett vegyületek előállítására ad
lehetőséget. Ezenkívül tiszta β– sugárzásának maximális energiája
csupán 18,6 keV, és a szervezetben tartózkodását leíró biológiai
felezési ideje is rövid, 12 nap, ezért biztonságosan használható fel,
egészségkárosító kockázata alacsony. Sugárzásának alacsony
energiájából ered az a hátrányos tulajdonsága, hogy csak kis
hatásfokkal mérhető, folyadékszcintillációs módszerrel is legfeljebb
60% érhető el. Előnyös azonban, hogy a trícium viszonylag olcsón
előállítható megnövelt Li-6 tartalmú Li-Mg ötvözet
neutronbesugárzásával, és a kapott trícium gázt hidrogénezési
eljárásokban alkalmazva a H-3 jelzett vegyületek egyszerűen
preparálhatók.
A trícium beépítése izotópcsere-reakciókkal, direkt
kémiai szintézissel és biokémiai, enzimatikus reakciókkal történhet. A
trícium gáz és a szerves molekulák hidrogénatomjai közötti
cserereakciók végbemenetelét a trícium sugárzási energiája teszi
lehetővé. Így azonban alcsonyabb moláris aktivitású jelzett vegyületek
állíthatók elő, és ezekben a radioaktív atomok helyzetét csak
statisztikai úton becsülhetjük. A modern élettudományi kutatások által
igényelt magasabb moláris aktivitású, specifikusan jelzett vegyületek
előállítására direkt kémiai szintézist kell alkalmazni. Ekkor a kémiai
reakciók által meghatározott pozíciókba építhetjük be a radioaktív
jelet, és a molekulán belüli izotópeloszlás tekintetében is homogén
terméket – nyomjelzett kísérleti eszközt kapunk. A jelölést elsősorban
trícium gázzal végzett hidrogénezési reakcióval vagy fém-tritidekkel
végzett redukcióval hajtjuk végre. Figyelemre méltó, hogy a trícium
atomtömege háromszor nagyobb, mint a próciumé (könnyűhidrogéné), így
az izotópeffektus jelentős. Végeredményben a kapott H-3 jelzett
vegyület alkalmazhatóságát a beépített radioaktív atom kémiai
stabilitása és a jelzett vegyület radiolízissel
|
|
szembeni érzékenysége határozza meg. Legstabilabb a
trícium jel, ha szénatomhoz kötődik, ezzel szemben labilis a jel, ha
heteroatomhoz (O, N, S) kötődik. Érdemes megkülönböztetni savakra,
bázisokra érzékeny és biolabilis pozíciókat is, mivel így a
felhasználás körülményeinek megválasztásában segítünk.
Laboratóriumunkban az opioid receptorrendszerekkel
foglalkozunk. Az opioid receptorok (morfinreceptorok) jelenlétét
1973-ban tríciált morfin, naloxon és etorfin felhasználásával
radioreceptor-kötési vizsgálatokkal bizonyították, majd azonosították
azok kis molekulatömegű endogén peptid ligandumait (enkefalinok,
dinorfinok, endomorfinok) is (Pasternak, 2004). (A ligandumok kis
molekulatömegű vegyületek, amelyek a nagy molekulatömegű receptor
molekulához kötődnek.) Mivel az opioid rendszer nagyon összetett és az
egyes receptorfehérjék szerkezete mindmáig ismeretlen, ezért rengeteg
radioligand receptor kötési kísérleten alapuló szerkezet-hatás
összefüggésvizsgálatot végeztek az ideális, specifikus hatást kiváltó,
mellékhatásoktól mentes opioid fájdalomcsillapítók fejlesztése
érdekében. Csoportunkban számos, az opioid receptorok kutatásában
alkalmazott H-3 jelzett alkaloid és peptid típusú radioligandum
előállítását dolgoztuk ki. A peptidek aminosavakból felépülő
vegyületek, ahol az N-terminális rész (-NH2) a vegyület
elejét és a C terminális rész (-COOH) a végét jelenti. Az élő
szervezetben jelenlévő proteolitikus enzimek bontják
a peptid kötéseket, így a peptidek kevesbé stabil vegyületek. Ezért
fontos, hogy béta aminosavak legyenek a peptidekben, hogy enzimekkel
szemben ellenálló vegyületeket kapjunk. A tríciált peptideket
általában a megfelelő prekurzor peptidekből trícium gáz és palládium
katalizátorok felhasználásával állítjuk elő (Tóth et al., 1997;
1. ábra). Redukcióra érzékeny peptidek
esetében tríciált aminosavak felhasználásával lépésenkénti
peptidszintézist alkalmazunk a jelzett peptidek előállítására.
Az opioid peptidek családjába tartozó
endomorfinokat (endomorfin-1: Tyr-Pro-Trp-Phe-NH2,
endomorfin-2: Tyr-Pro-Phe-Phe-NH2) James E. Zadina és
munkatársai izolálták marhaagyból (Zadina et al., 1997). A két
tetrapeptid amid a μ opioid receptorok endogén liganduma, nagy
affinitással és szelektivitással aktiválják azt. Emiatt az
endomorfinok új analgetikumok fejlesztésére alkalmas vezérvegyületek.
Publikálásukat követően azonnal előállítottuk az endomorfinok több H-3
jelzett származékát. A szintézisekhez a 2. táblázatban felsorolt
prekurzor endomorfinszármazékokat használtuk fel. Ezek katalitikus
dehalogénezésével vagy telítésével olyan nagy moláris aktivitású
izotopomereket kaptunk, amelyek a radioaktív jelet különböző
aminosavakban hordozták. A kapott radioligandumokat receptorkötődési
vizsgálatokban jellemeztük, majd patkányagyban történő degradációs
vizsgálataikkal bizonyítottuk, hogy proteolitikus lebomlásuk a Pro2
és a Trp3/Phe3 aminosavak közötti peptidkötés
hasadásával kezdődik, és a képződő dipeptidek hidrolízisével végződik.
A metabolizmusvizsgálatok eredményeiből kiindulva proteolitikus
enzimekkel szemben ellenálló, új endomorfinszármazékokat állítottunk
elő, ahol a Pro2 aminosavat aliciklusos béta aminosavakkal
(2-amino-ciklopentán karbonsav – Acpc;
2-amino-ciklohexán karbonsav – Achc) helyettesítettük, illetve
dimetil-tirozint építettünk az N-terminális pozícióba. Mivel az így
kapott vegyületek megőrizték μ opioid receptor affinitásukat, és az
enzimatikus stabilitásuk is nőtt, ezért néhányat tríciummal is
jelöltünk. Az ehhez szükséges új prekurzor aminosavakat a
2. ábra mutatja, ezek kereskedelmi
forgalomban nem kaphatóak, és mi alkalmaztuk elsőként radioaktív
jelölés prekurzoraiként.
A tríciált peptidek a fluoreszcencia mérésén
alapuló technikák elterjedése mellett még mindig jelentős kutatási
eszközök, hiszen éppen a vizsgált molekulával való kémiai azonosságuk
teszi lehetővé az abszolút szerkezet-hatás vizsgálatokat. Így
ismeretlen szerkezetű receptor fehérjéken végzett radioligandum kötési
vizsgálatokkal nagyszámú vegyület affinitása vizsgálható,
autoradiográfiás mérésekkel az adott receptorok szöveti eloszlása
vizualizálható. Ezenfelül a radioaktív peptidek enzim inhibitorok
jellemzését is segíti, illetve az elsősorban I-125 jelzett vegyületek
a radioimmunoassay (RIA) módszerek antigénjei.
Kulcsszavak: radioaktivitás, nyomjelzéstechnika, trícium jelölés,
radionuklidok kiválasztása, neuropeptidek, opioidok, endomorfinok
IRODALOM
Becquerel, Henri (1896): Sur les
radiations émises par phosphorescence. Comptes Rendus. 122, 420. •
WEBCÍM >
Hevesy, George de [György] – Paneth, F.
(1913): The Solubility of Lead Sulphide and Lead Chromate. Zeitschrift
für anorganische Chemie. 82, 322–327.
Pasternak, Gavril W. (2004): Multiple
Opiate Receptors: Déjá Vu All over Again. Neuropharmacology. 47,
312–323. DOI:10.1016/j.neuropharm.2004.07.004
Tóth Géza – Lovas S. – Ötvös F. (1997):
Tritium Labelling of Neuropeptides. In: Irvine, G. Brent – Williams,
Carvell H. (eds.): Molecular Biology, Neuropeptide Protocols. Humana
Press: Totowa, NJ, 219–230. •
WEBCÍM >
Zadina, James E. – Hackler, L. – Ge, L-J.
– Kastin A. J. (1997): A Potent and Selective Endogenous Agonist for
Mu-opioid Receptor. Nature. 386, 499–502. DOI:10.1038/386499a0
|
|